- Etuve avec CO2 à 35C° - Microscope optique binoculaire - Densitomètre
-Lames - Pipettes Pasteur en verre - Ecouvillons en coton
→Bleu de méthylène
→ Colorants pour le Gram (violet de Gentiane, Lugol, alcool à 70°, fuschine)
→Tubes d’eau physiologique stérile
→Milieux de culture :
- Gélose au sang frais - Gélose au sang cuit - Gélose au sang cuit+vancomycine+colistine+fungizone (VCF) - Gélose Chapman - Gélose Sabouraud+chloramphénicol - Gélose chocolat+supplément G - Gélose Tinsdale
→ Disques de facteurs de croissance X, V, VX-OXOID : Réf. : x2184c
→ Pastorex Strep-Bio-Rad: Réf. : 61721
→ Serums d’agglutination pours Pseudomonas aeruginosa-Bio-Rad: Réf. : 92430
→ Auxacolor 2-Bio-Rad- Réf. : 56513
→ Disques d’antibiotiques
→ Disques d’antifongiques.
↪ L’ensemencement des prélèvements se fait immédiatement après vérification du numéro d’enregistrement de la fiche de renseignement et de l’échantillon
↪- Préparer et numéroter les géloses à ensemencer ainsi que les lames pour la coloration de Bleu de méthylène.
- Streptocoques ß-hémolytiques du groupe A, C et G
- Streptocoques ß-hémolytiques du groupe A, C et G
- Staphylococcus aureus
- Entérobactéries et autres BGN
- Moraxella catarrhalis
- Arcanobacterium haemolyticum
- Candida albicans
- Corynebacterium diphteriae (dans le cadre d’une angine pseudomembraneuse)
- Neisseria gonorrhoeae (dans le cadre d’un bilan d’IST)
- un frottis est réalisé sur une lame microscopique directement à partir du prélèvement
- faire une coloration au bleu de méthylène
- signaler la présence ou l’absence des polynucléaires neutrophiles, lymphocytes.
- noter la présence d’une flore prédominante
→ La lecture se fait après 24 et 48h d’incubation
→ Bactérie isolée : se référer au fascicule de standardisation de l’antibiogramme à l’échelle nationale