🏽 Milieu : Gélose Mueller-Hinton
🏽 Inoculum : 0,5 McFarland.
🏽 Incubation : Atmosphère normale, 35±2ºC, 20±4H.
◉ Les antibiotiques sont divisés en deux listes distinctes :
Céfoxitine (dépistage), Gentamicine, Erythromycine, Clindamycine, Quinupristine-dalfopristine, Norfloxacine (dépistage), Fluoroquinolone, Linézolide, Acide fusidique, Cotrimoxazole, Rifampicine.
Pénicilline G, Oxacilline, Ceftaroline, Ceftobiprole, Vancomycine, Téicoplanine, Kanamycine, Tobramycine, Nétilmicine, Triméthoprime, Chloramphénicol, Tétracycline, Minocycline, Eravacycline, Tigécycline, Tédizolide, Nitrofurantoïne, Daptomycine, Mupirocine, Fosfomycine.
Les antibiotiques sont divisés en 4 groupes, A, B, C et U, distinctes, approuvé par la Food and Drug Administration des États-Unis pour un usage clinique :
Groupe A
Azithromycine ou clarithromycine ou érythromycine, Clindamycine, Oxacilline, Céfoxitine (test de substitution pour l'oxacilline), Pénicilline, Triméthoprime-sulfaméthoxazole.
Groupe B
Ceftaroline, Daptomycine, Linézolide, Tédizolide, Doxycycline, Minocycline, Tetracycline, Vancomycin, Rifampinh.
Groupe C
Chloramphénicol, Ciprofloxacine ou lévofloxacine, Moxifloxacine, Gentamicine, Dalbavancine, Oritavancine,Télavancine,
Groupe U
Nitrofurantoine, Sulfisoxazole, Triméthoprime.
Les antibiotiques à tester dans l'antibiogramme Staphylocoque selon CLSI et EUCAST |
|||||||||
|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
| Pénicillines | Espèces bactériennes | Disque |
Ø S |
Ø I |
Ø R |
CMI S |
CMI I |
CMI R |
Commentaires |
| Pénicilline selon CLSI |
Tous les staphylocoques | 10 U | ≥29 | / | ≤28 | ≤0.12 | / | ≥0.25 | ● Les staphylocoques résistants à la pénicilline sont résistants aux pénicillines labiles à la pénicillinase (pénicilline G, aminopénicillines, phénoxyméthylpénicilline, carboxypénicilines et ureidopénicillines) . |
| Pénicilline G selon EUCAST |
S. aureus. | 1 U | ≥26 | / | <26 | ≤0,125 | / | >0.125 | ● La méthode de diffusion en milieu gélosé est plus fiable que la
détermination de la CMI pour la détection de souche productrice de
pénicillinase (visualise le diamètre d'inhibition et l'aspect
de la bordure ). ● La sensibilité à la pénicilline ne doit pas être rendue pour les stapylocoques non-aureus (pas de méthode fiable de détection de la production de pénicillinase pour les espèces autres que S. aureus). |
| Oxacilline (OX, OXA) selon CLSI |
S. aureus et S. lugdunensis
S. epidermidis, S. pseudintermedius et S. schleiferi |
/ 1µg |
/
≥18 |
/ / |
/ ≤17 |
≤ 2 ≤0.25 |
/ / |
≥ 4 ≥0.5 |
● Disque d'oxacilline n'est pas fiable pour tester S. aureus et S. lugdunensis.
● Les staphylocoques résistants à la méthicilline (oxacilline) sont résistants à tous les beta-lactamines actuellement disponibles à l'exception de la ceftaroline. (Plus de details ) |
| Oxacilline (OX, OXA) selon EUCAST |
S. aureus, S. lugdunensis et S. saprophyticus autres espèces |
/ / |
/ / |
/ / |
/ / |
≤2 ≤ 0.25 |
/ / |
> 2 > 0.25 |
● Disque céfoxitine (FOX) est utilisée pour la détection des souches résistantes à l'oxacilline.
● Les souches de staphylocoques résistantes à la céfoxitine doivent être interprétées résistantes à toutes les bêta-lactamines (pénicillines associées ou non à un inhibiteur de bêta-lactamase, céphalosporines et carbapénèmes), sauf à la ceftaroline et au ceftobiprole |
| Ampicilline (dépistage),
selon EUCAST |
S. saprophyticus | 2 U | ≥18 | / | <18 | / | / | / | ● Si le diamètre est <18 mm, la souche est résistante à l'ampicilline, l'amoxicilline et la piperacilline et il faut réaliser un test cefoxitine pour déterminer la sensibilité à la méticilline. |
| Céphalosporines | Espèces bactériennes | Disque |
Ø S |
Ø I |
Ø R |
CMI S |
CMI I |
CMI R |
Commentaires |
|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
| Céfoxitine selon CLSI | S. aureus et S. lugdunensis
Autres espèces (sauf S. pseudintermedius et S. schleiferi) |
30 μg | ≥22 ≥25 |
/ / |
≤21 ≤24 |
≤4 / |
/ / |
≥8 / |
● Ni les CMI ni les disques de céfoxitine sont fiables pour détecter la résistance par le gene mecA chez S. pseudintermedius et S. schleiferi.
● Les staphylocoques résistants à la céfoxitine sont résistants à tous les agents antimicrobiens beta-lactamines actuellement disponibles à l'exception de la ceftaroline. |
| Céfoxitine selon EUCAST (dépistage) | S. aureus, et S. non-aureus
autres que S. epidermidis. S. epidermidis |
30 μg | ≥22 ≥25 |
/ / |
<22 <25 |
* / |
/ / |
* / |
* S. aureus et S. lugdunensis caractérisés par des CMI de la
céfoxitine >4 mg/L, et S. saprophyticus caractérisé par des CMI de
la céfoxitine >8 mg/L sont résistants à la méticilline principalement du
fait de la présence d'un gène mec additionel. ● Les souches de staphylocoques résistantes à la céfoxitine doivent être interprétées résistantes à toutes les bêta-lactamines (pénicillines associées ou non à un inhibiteur de bêta-lactamase, céphalosporines et carbapénèmes), sauf à la ceftaroline et au ceftobiprole |
| Ceftaroline selon CLSI | S. aureus, y compris le SARM | 30µg | ≥25 | SDD 20_24 |
≤19 | ≤ 1 | SDD 2_4 |
≥ 8 | ● Le seuil de sensibilité est basé sur un schéma posologique de
600 mg administrés toutes les 12h. ● SDD : Susceptible Dose Dependent |
| Ceftaroline selon EUCAST | S. aureus S. aureus (pneumonie) |
5 µg 5 µg |
≥20 ≥20 |
ZIT 19-20 |
<17 <20 |
≤1 ≤ 1 |
/ / |
>2 >1 |
● Les souches de S. aureus sensibles à la méticilline sont sensibles
à la ceftaroline. ● ZIT : Zone d'Incertitude Technique |
| Fluoroquinolones | Espèces bactériennes | Disque |
Ø S |
Ø I |
Ø R |
CMI S |
CMI I |
CMI R |
Commentaires |
|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
| CLSI : Staphylococcus spp peut développer une résistance au cours d'un traitement prolongé avec des quinolones. Par conséquent, les isolats initialement sensibles peuvent devenir résistants en 3 à 4 jours après le début du traitement. Le test d'isolats répétés peut être justifié. | |||||||||
| Norfloxacine selon CLSI | Tous les staphylocoques | 10 μg | ≥17 | 13-16 | ≤12 | ≤4 | 8 | ≥ 16 | ● Pour les tests et la déclaration des isolats des voies urinaires uniquement. |
| Norfloxacine selon EUCAST (dépistage) | Tous les staphylocoques | 10 µg | ≥17 | ● Les souches catégorisées sensibles à la norfloxacine peuvent être rendues sensibles à forte posologie à la ciprofloxacine et à la lévofloxacine et sensibles à la moxifloxacine. Pour les souches non sensibles à la norfloxacine, chaque fluoroquinolone doit être testée individuellement et rendue telle qu'elle est catégorisée | |||||
| Ciprofloxacine selon CLSI | Tous les staphylocoques | 5 μg | ≥21 | 16-20 | ≤15 | ≤1 | 2 | ≥4 | |
| Ciprofloxacine selon EUCAST | S. aureus S. non-aureus |
5 µg 5 µg |
≥50 ≥50 |
/ / |
<21 <24 |
≤0,001 ≤0,001 |
/ / |
>1 >1 |
|
| Lévofloxacine selon CLSI | Tous les staphylocoques | 5 μg | ≥19 | 16_18 | ≤15 | ≤1 | 2 | ≥4 | |
| Lévofloxacine selon EUCAST | S. aureus S. non-aureus |
5 µg 5 µg |
≥50 ≥50 |
/ / |
<22 <24 |
≤0,001 ≤0,001 |
/ / |
>1 >1 |
● Une
souche résistante à la lévofloxacine doit être répondue résistante à toutes les fluoroquinolones.. |
| Moxifloxacine selon CLSI | Tous les staphylocoques | 5 μg | ≥24 | 21-23 | ≤20 | ≤0.5 | 1 | ≥2 | |
| Moxifloxacine selon EUCAST | S. aureus S. non-aureus |
5 µg 5 µg |
≥25 ≥28 |
/ / |
<25 <28 |
≤0,25 ≤0,25 |
/ / |
>0.25 >0.25 |
● Une
souche résistante à la moxifloxacine doit être répondue résistante à toutes les fluoroquinolones.. |
| Ofloxacine selon CLSI | Tous les staphylocoques | 5 μg | ≥18 | 15-17 | ≤14 | ≤1 | 2 | ≥4 | |
| Délafloxacine selon EUCAST | S. aureus | / | / | / | / | ≤0,25 | / | >0.25 | |
| Enoxacin selon CLSI | Tous les staphylocoques | 10 μg | ≥18 | 15-17 | ≤14 | ≤2 | 4 | ≥8 | ● Pour les tests et la déclaration des isolats des voies urinaires uniquement. |
| Aminosides | Espèces bactériennes | Disque |
Ø S |
Ø I |
Ø R |
CMI S |
CMI I |
CMI R |
Commentaires | |
|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
| Gentamicine selon CLSI |
Tous les staphylocoques | 10 µg | ≥15 | 13-14 | ≤12 | ≤4 | 18 | ≥16 | ● Pour les staphylocoques qui se révèlent sensibles, la gentamicine est utilisée uniquement en association avec d'autres agents actifs. | |
| Gentamicine selon EUCAST | S. aureus S. non-aureus |
10 µg 10 µg |
≥18 ≥22 |
/ / |
<18 <22 |
≤1 ≤1 |
/ / |
>1 >1 |
●
Les souches résistantes à la
gentamicine sont résistantes à l'ensemble des aminosides. |
|
| Tobramycine selon EUCAST | S. aureus S. non-aureus |
10 µg 10 µg |
≥18 ≥22 |
/ / |
<18 <22 |
≤1 ≤1 |
/ / |
>1 >1 |
●
Les souches résistantes à la tobramycine sont résistantes à la
kanamycine et à l'amikacine. |
|
| Kanamycine /Amikacine. selon EUCAST | S. aureus S. non-aureus |
30 µg 30 µg |
≥18 ≥22 |
/ / |
<18 <22 |
≤8 ≤8 |
/ / |
>8 >8 |
●
Les souches résistantes à la tobramycine sont résistantes à la
kanamycine et à l'amikacine. |
|
| Nétilmicine selon EUCAST | S. aureus | 10 µg | EPI : élément de preuve insuffisant | |||||||
| Glycopeptides | Espèces bactériennes | Disque |
Ø S |
Ø I |
Ø R |
CMI S |
CMI I |
CMI R |
Commentaires |
|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
| CLSI : Des tests de CMI doivent être effectués pour déterminer la sensibilité de tous les isolats de staphylocoques à la vancomycine. Le test du disque ne différencie pas les isolats sensibles à la vancomycine de S. aureus des isolats intermédiaires à la vancomycine, et le test ne différencie pas non plus les isolats sensibles,
intermédiaires et résistants à la vancomycine de Staphylococcus spp. autres que S. aureus, qui donnent tous des zones d'inhibition de taille similaire. EUCAST : La méthode de référence pour la détermination des CMI des glycopeptides est la microdilution en milieu liquide (référence ISO 20776). La détermination de la sensibilité aux glycopeptides ne doit pas être réalisée par diffusion en milieu gélosé. |
|||||||||
| Vancomycine selon CLSI |
S. aureus S. non-aureus |
/ / |
/ / |
/ / |
/ / |
≤2 ≤4 |
4-8 8_16 |
≥16 ≥32 |
●
Envoyez toutes les souches résistantes à un laboratoire de référence. ● Pour S. aureus, les isolats sensibles à la vancomycine peuvent devenir des intermédiaires à la vancomycine au cours d'un traitement prolongé. |
| Vancomycine selon EUCAST | Tous les staphylocoques | / | / | / | / | ≤2 | / | >2 | ● Les souches sensibles à vancomycine sont sensibles à la dalbavancine, à l'oritavancine et à la télavancine. |
| Téicoplanine selon CLSI |
Tous les staphylocoques | / | / | / | / | ≤8 | 16 | ≥32 | |
| Téicoplanine selon EUCAST |
S. aureus S. non-aureus |
/ / |
/ / |
/ / |
/ / |
≤2 ≤4 |
/ / |
>2 >4 |
|
| Télavancine selon CLSI |
S. aureus | / | / | / | / | ≤0.12 | / | / | |
| Télavancine selon EUCAST |
S. aureus (SARM) | / | / | / | / | ≤0.125 | / | >0.125 | |
| Dalbavancine selon CLSI |
S. aureus | / | / | / | / | ≤0.25 | / | / | |
| Dalbavancine selon EUCAST |
Tous les staphylocoques | / | / | / | / | ≤0.125 | / | >0.125 | |
| Oritavancine selon CLSI |
S. aureus | / | / | / | / | ≤0.12 | / | / | |
| Oritavancine selon EUCAST |
S. aureus | / | / | / | / | ≤0.125 | / | >0.125 | |
| Macrolides, lincosamides, streptogramines | Espèces bactériennes | Disque |
Ø S |
Ø I |
Ø R |
CMI S |
CMI I |
CMI R |
Commentaires |
|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
| Erythromycine selon CLSI |
Tous les staphylocoques | 15µg | ≥23 | 14-22 | ≤13 | ≤0.5 | 1-4 | ≥8 | ● Pour les tests et la déclaration des isolats des voies urinaires uniquement. |
| Erythromycine selon EUCAST |
S. aureus | 15µg | ≥21 | / | <18 | ≤1 | / | >2 | ● L'érythromycine peut être utilisée pour déterminer la sensibilité à l'azithromycine, la clarithromycine et la roxithromycine. |
| Azithromycine / Clarithromycine selon CLSI |
Tous les staphylocoques | 15µg | ≥18 | 14-17 | ≤13 | ≤2 | 4 | ≥8 | ● Pour les tests et la déclaration des isolats des voies urinaires uniquement. |
| Azithromycine / Clarithromycine / Roxithromycine selon EUCAST |
Tous les staphylocoques | / | / | / | / | ≤1 | / | >2 | ● L'érythromycine peut être utilisée pour déterminer la sensibilité à l'azithromycine, la clarithromycine et la roxithromycine. Télithromycine IE |
| Clindamycine selon CLSI |
Tous les staphylocoques | 2µg | ≥21 | 15_20 | ≤14 | ≤0.5 | 1-2 | ≥4 | ● Pour les isolats la résistantes à l'érythromycine et la sensibiles ou intermédiaire à la clindamycine , le test de l'ICR (inducible clindamycin resistance) par diffusion sur disque à l'aide du test de la zone D ou par microdilution en bouillon est requis avant de déclarer la clindamycine |
| Clindamycine selon EUCAST |
Tous les staphylocoques | 2µg | ≥22 | / | <19 | ≤0,25 | / | >0,5 | ● En l'absence d'induction (D test ), répondre sensible à la clindamycine, spiramycine et lincomycine. En présence d'induction, répondre sensible à spiramycine, lincomycine et clindamycine avec le message suivant : de rares échecs cliniques ont été rapportés par selection de mutants constitutifs résistants. En cas de résistance à la clindamycine, l'activité de la pristinamycine est diminuée. |
| Lincomycine selon EUCAST |
Tous les staphylocoques | / | / | / | / | ≤2 | / | >8 | |
| Quinupristine-dalfopristine selon CLSI |
S. aureus | 15µg | ≥19 | 16_18 | ≤15 | ≤1 | 2 | ≥4 | |
| Quinupristine-dalfopristine selon EUCAST |
Tous les staphylocoques | 2µg | ≥21 | / | <18 | ≤1 | / | >2 | ● La quinupristine-dalfopristine peut être utilisée pour déterminer la
sensibilité à la pristinamycine. Les souches « I » forte posologie ou «résistantes» par diffusion la sensibilité doit être confirmée par la détermination de la CMI. |
| Pristinamycine selon EUCAST |
Tous les staphylocoques | / | / | / | / | ≤1 | / | >2 | ● La quinupristine-dalfopristine peut être utilisée pour déterminer la
sensibilité à la pristinamycine. Les souches « I » forte posologie ou «résistantes» par diffusion la sensibilité doit être confirmée par la détermination de la CMI. |
| Tétracyclines | Espèces bactériennes | Disque |
Ø S |
Ø I |
Ø R |
CMI S |
CMI I |
CMI R |
Commentaires |
|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
| Tétracycline selon CLSI |
Tous les staphylocoques | 30 µg | ≥19 | 15_18 | ≤14 | ≤4 | 8 | ≥16 | ● Les organismes sensibles à la tétracycline sont également considérés comme sensibles à la doxycycline et à la minocycline. |
| Tétracycline selon EUCAST |
Tous les staphylocoques | 30µg | ≥22 | / | <19 | ≤1 | / | >2 | ● Les souches sensibles à la tétracycline sont aussi sensibles à la doxycycline et la minocycline. Pour les souches résistantes à la tétracycline, la sensibilité à la doxycycline doit être vérifiée si nécessaire par une mesure de la CMI. |
| Doxycycline selon CLSI |
Tous les staphylocoques | 30 µg | ≥16 | 13_15 | ≤12 | ≤4 | 8 | ≥16 | |
| Doxycycline selon EUCAST |
Tous les staphylocoques | 30µg | / | / | / | ≤1 | / | >2 | |
| Minocycline selon CLSI |
Tous les staphylocoques | 30 µg | ≥19 | 15_18 | ≤14 | ≤4 | 8 | ≥16 | ● Non rapporté de façon routinière sur les organismes isolés des voies urinaires. |
| Minocycline selon EUCAST |
Tous les staphylocoques | 30µg | ≥23 | / | <23 | ≤0.5 | / | >0.5 | |
| Tigécycline selon EUCAST |
Tous les staphylocoques | 15µg | ≥19 | / | <19 | ≤0.5 | / | >0.5 | ● Les diamètres critiques ne sont valides que pour les SASM. Pour les
SARM, réaliser une CMI. Les souches présentant de tels résultats doivent être vérifiées puis adressées pour confirmation dans un laboratoire référent. |
| Autres | Espèces bactériennes | Disque |
Ø S |
Ø I |
Ø R |
CMI S |
CMI I |
CMI R |
Commentaires |
|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
| Chloramphénicol selon CLSI |
Tous les staphylocoques | 30 µg | ≥18 | 13_17 | ≤12 | ≤8 | 16 | ≥32 | ● Non rapporté de façon routinière sur les organismes isolés des voies urinaires. |
| Chloramphénicol selon EUCAST |
Tous les staphylocoques | 30µg | ≥18 | / | <18 | ≤8 | / | >8 | ● Interprétation valable pour thiamphénicol |
| Fosfomycine selon EUCAST |
Tous les staphylocoques | / | / | / | / | ≤32 | / | >32 | ● La methode de référence pour la détermination de la CMI est la dillution en milieu gélosé en présence de glucoses-6-phosphate (25mg/L). |
| Acide fusidique selon EUCAST |
Tous les staphylocoques | 10µg | ≥24 | / | <24 | ≤1 | / | >1 | |
| Nitrofurantoïnes selon CLSI |
Tous les staphylocoques | 300 µg | ≥17 | 15_16 | ≤14 | ≤32 | 64 | ≥128 | ● Seulement pour les organismes isolés des voies urinaires. |
| Nitrofurantoïnes (cystite) selon EUCAST |
Tous les staphylocoques | 100µg | ≥13 | / | <13 | ≤64 | / | >64 | |
| Nitrofurantoïne est l'antibiotique de choix dans les infections urinaires à S. saprophyticus (100 mg par voie orale deux fois par jour pendant cinq jours, ou pendant sept jours dans les cas compliqués) (3). | |||||||||
| Acide fusidique selon EUCAST |
Tous les staphylocoques | 100µg | ≥13 | / | <13 | ≤64 | / | >64 | |
| Triméthoprime sulfaméthoxazole selon CLSI |
Tous les staphylocoques | 1.25/23.75 µg | ≥16 | 11_15 | ≤10 | ≤2/38 | / | ≥4/76 | |
| Triméthoprime sulfaméthoxazole selon EUCAST |
Tous les staphylocoques | 1,25- 23,75 µg | ≥17 | / | <14 | ≤2 | / | >4 | ● Interprétation valable pour les autres associations triméthoprimesulfamide. |
| Rifampicine selon CLSI |
Tous les staphylocoques | 5 µg | ≥20 | 17–19 | ≤16 | ≤1 | 2 | ≥4 | ● La rifampicine ne doit pas être utilisée seule pour un traitement antimicrobien. |
| Rifampicine selon EUCAST |
Tous les staphylocoques | 5 µg | ≥26 | / | <23 | ≤0.06 | / | >0.5 | |
| Linézolide selon CLSI |
Tous les staphylocoques | 30 µg | ≥21 | / | ≤20 | ≤4 | / | ≥8 | ● Lors du test du linézolide, les zones de diffusion du disque doivent être examinées à l'aide de la lumière transmise. Les organismes avec des résultats résistants par diffusion sur disque doivent être confirmés à l'aide d'une CMI méthode. |
| Linézolide selon EUCAST |
Tous les staphylocoques | 10 µg | ≥21 | / | <21 | ≤4 | / | >4 | ● Examiner la bordure de la zone d'inhibition à la lumière. La résistance inductible peut nécessiter une incubation prolongée à 48 heures pour être détectée. |
| Tédizolide selon CLSI |
S. aureus | / | / | / | / | ≤0.5 | / | ≥2 | |
| Tédizolide selon EUCAST |
Tous les staphylocoques | 2 µg | ≥21 | / | <21 | ≤0.5 | / | >0.5 | ● Les souches sensibles au linézolide sont aussi sensibles au tédizolide. Pour les souches résistantes au linézolide, la sensibilité au tédizolide doit être déterminée |
Référence